113 年 國立成功大學生理學研究所《分子生物學》

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第 1 題30 分

為了偵測基因 (RNA) 的表現,即時定量聚合酶連鎖反應服務 (quantitative real-time PCR service) 是相當普遍使用的技術。請問如何從 RNA 去進行分析?以及如何設計一對專一的引子 (primer)?設計引子時需要注意哪些條件?

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本題主要考驗學生對於 quantitative real-time PCR (qRT-PCR) 技術的理解,包含其基本原理、RNA 樣品處理、以及引子設計的關鍵考量。

核心觀念:
qRT-PCR 是一種量化 RNA 表達量的技術,其核心步驟包括 RNA 的提取、反轉錄 (cDNA 合成) 以及 PCR 擴增與即時偵測。引子設計是確保 PCR 反應專一性與效率的關鍵。

解題步驟:

  1. 從 RNA 進行分析的步驟:

    • RNA 提取 (RNA Extraction): 首先需要從細胞或組織樣本中提取總 RNA (total RNA)。這通常涉及細胞裂解、RNA 純化(利用 RNase 抑制劑保護 RNA 不被降解)等步驟。
    • RNA 質量與定量 (RNA Quality and Quantification): 提取的 RNA 需要評估其質量(例如使用分光光度計測量 A260/A280 比值,或使用電泳檢測 28S 和 18S rRNA 的完整性)和定量 (concentration)。
    • 反轉錄 (Reverse Transcription): RNA 是單股 RNA 分子,無法直接作為 PCR 的模板。因此,需要使用反轉錄酶 (reverse transcriptase) 將 RNA 反轉錄成互補的 DNA (complementary DNA, cDNA)。此步驟通常使用隨機引子 (random primers) 或寡聚 (oligo-dT) 引子來起始 cDNA 合成。
    • 定量 PCR (Quantitative PCR, qPCR): 合成的 cDNA 將作為 PCR 的模板,與設計好的特定基因引子一起進行 PCR 擴增。qRT-PCR 使用螢光染料 (如 SYBR Green) 或螢光標記的探針 (probe) 來偵測 PCR 產物的累積。螢光訊號的強度與 PCR 循環數的關係被即時監測,用以定量起始的 RNA 模板量。通過與已知濃度的標準品比較,或使用內參基因 (housekeeping gene) 進行相對定量,可以得出目標基因 RNA 的表達水平。
  2. 設計專一的引子 (Primer Design):
    引子是短的單股 DNA 分子,能夠與模板 DNA 序列結合,並作為 DNA 聚合酶延伸的起始點。為了準確量化特定基因的 RNA 表達,引子必須高度專一,只擴增目標基因的 cDNA。

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第 2 題30 分

基因剔除鼠 (Genetic knockout mice) 為醫學上應用來作為了解基因的用途。何謂全身性基因剔除 (constitutive knockout) 及條件式剔除 (conditional knockout)? 請問如何達成專一組織的條件式剔除 (tissue-specific conditional knockout) 及時間依賴的條件式剔除 (time-dependent conditional knockout)?

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本題主要考驗學生對基因剔除小鼠模型的理解,特別是兩種主要類型——全身性基因剔除和條件式基因剔除,以及條件式基因剔除在組織專一性和時間依賴性方面的實現方式。

核心觀念:
基因剔除小鼠是透過基因工程技術,使特定基因失活,進而研究該基因在生理和病理過程中的功能。全身性基因剔除會影響整個生物體,而條件式基因剔除則能控制基因失活發生的時間或部位,提供更精確的研究工具。

解題步驟:

  1. 全身性基因剔除 (Constitutive Knockout):

    • 定義: 在動物生命週期的所有細胞、所有時間點,該基因的功能都被永久性地、普遍地剔除或失活。
    • 實現方式: 通常透過胚胎幹細胞 (embryonic stem cells, ESCs) 在體外進行基因打靶 (gene targeting),將目標基因的 DNA 序列替換為無功能的序列(如抗生素抗藥性基因),然後將改造過的 ESCs 注射到早期胚胎 (blastocyst) 中,再將胚胎植入代孕母鼠。由此產生的子代小鼠,其體細胞和生殖細胞中的目標基因都會被剔除。
    • 優缺點: 優點是能快速獲得基因剔除的表型。缺點是,如果該基因在胚胎發育早期就至關重要,則可能導致胚胎致死,無法產生存活的成年小鼠;或者,剔除該基因可能引發其他基因的代償性反應,使表型難以歸因於單一基因。
  2. 條件式剔除 (Conditional Knockout, cKO):

    • 定義: 該基因的剔除不是永久或全身性的,而是可以被特定條件(如特定組織、特定細胞類型、或特定時間點)所控制。
    • 實現方式 (Cre-loxP 系統): 目前最常用的條件式剔除系統是基於 Cre 重組酶 (Cre recombinase) 和 loxP 位點 (locus of X-P1) 的組合。
      • loxP 位點: 是一種 34 bp 的 DNA 序列,包含一個 8 bp 的核心序列和兩個 13 bp 的迴文序列。Cre 重組酶能夠識別並切割 loxP 位點之間的 DNA 序列。
      • Cre 重組酶: 是一種來自噬菌體的酶,能夠在兩個 loxP 位點之間催化 DNA 的重組,導致中間序列的刪除 (deletion)、倒轉 (inversion) 或轉位 (translocation)。
    • 如何達成 cKO:
      • 首先,需要創建帶有 loxP 位點「側翼」包圍目標基因的「flox化」(flox化, floxed) 小鼠。這表示目標基因的關鍵區域(例如外顯子)被兩個 loxP 位點所夾持。
      • 然後,將這種「flox化」小鼠與另一種轉基因小鼠雜交,這種小鼠表達 Cre 重組酶。Cre 的表達模式(由其啟動子決定)將決定基因剔除的時機和地點。
  3. 達成專一組織的條件式剔除 (Tissue-Specific Conditional Knockout):

    • 原理: 讓 Cre 重組酶僅在目標組織或細胞中表達。
    • 實現方式:
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第 3 題12 分

請詳述在細胞內基因 (DNA) 到蛋白質 (protein) 的轉錄 (transcription) 及轉譯 (translation) 過程,並在描述過程中所參與的細胞胞器 (organelle)。

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本題主要考驗學生對細胞內中心法則 (Central Dogma) 中兩個關鍵過程——轉錄和轉譯的理解,以及它們發生的細胞位置和參與的分子機制。

核心觀念:
中心法則描述了遺傳信息的流動方向:DNA → RNA → Protein。轉錄是將 DNA 序列的信息轉錄成 RNA (主要是 mRNA) 的過程;轉譯是將 mRNA 序列的信息翻譯成蛋白質氨基酸序列的過程。

解題步驟:

  1. 轉錄 (Transcription):

    • 定義: 在細胞核內,以 DNA 為模板,合成互補的 RNA 分子(主要是信使 RNA, mRNA)的過程。
    • 發生位置: 真核細胞中主要發生在細胞核 (nucleus)。原核細胞沒有細胞核,轉錄和轉譯同時發生在細胞質中。
    • 主要參與者:
      • DNA 模板: 提供遺傳信息的 DNA 序列。
      • RNA 聚合酶 (RNA Polymerase): 負責催化 RNA 合成的關鍵酶。在真核細胞中,有幾種類型的 RNA 聚合酶,其中 RNA 聚合酶 II 負責合成 mRNA。
      • 轉錄因子 (Transcription Factors): 一類蛋白質,能夠識別 DNA 上的特定啟動子 (promoter) 和增強子 (enhancer) 序列,並與 RNA 聚合酶結合,調控轉錄的起始、延伸和終止。
    • 過程簡述:
      • 起始 (Initiation): 轉錄因子識別並結合到 DNA 上的啟動子區域,幫助 RNA 聚合酶結合到啟動子處,解開 DNA 雙螺旋,形成轉錄泡 (transcription bubble)。
      • 延伸 (Elongation): RNA 聚合酶沿著 DNA 模板鏈移動,以 DNA 序列為模板,按照鹼基互補配對原則 (A-U, G-C),合成一條新的 RNA 鏈。RNA 鏈的方向是 5' 端到 3' 端。
      • 終止 (Termination): 當 RNA 聚合酶遇到 DNA 上的終止信號序列時,轉錄反應停止,新合成的 RNA 分子從 DNA 模板和 RNA 聚合酶上釋放。
    • 真核細胞特有的轉錄後修飾 (Post-transcriptional Modification):
      • 加帽 (5' Capping): 在新合成 mRNA 的 5' 端加上一個特殊的鳥糞嘌呤核苷酸 (7-methylguanosine),這有助於 mRNA 的穩定性、運輸以及與核糖體的結合。
      • 加尾 (3' Polyadenylation): 在 mRNA 的 3' 端添加一串聚腺苷酸鏈 (poly-A tail),這也有助於 mRNA 的穩定性、運輸和翻譯效率。
      • 剪接 (Splicing): 去除 mRNA 前體 (pre-mRNA) 中的非編碼區(內含子, introns),將編碼區(外顯子, exons)連接起來,形成成熟的 mRNA。
  2. 轉譯 (Translation):

    • 定義: 在細胞質中,以 mRNA 為模板,利用核糖體 (ribosome) 和轉運 RNA (tRNA),將 mRNA 的密碼子 (codon) 序列翻譯成蛋白質氨基酸序列的過程。
    • 發生位置: 真核細胞和原核細胞都發生在細胞質 (cytoplasm),具體地點是核糖體 (ribosome)。
    • 主要參與者:
      • mRNA 模板: 攜帶遺傳密碼(由三個鹼基組成一個密碼子)的信使 RNA。
      • 核糖體 (Ribosome): 由核糖體 RNA (rRNA) 和蛋白質組成,是蛋白質合成的場所。核糖體有兩個亞基(大亞基和小亞基),它們結合在一起形成功能性的核糖體,其中包含 A 位點 (aminoacyl site)、P 位點 (peptidyl site) 和 E 位點 (exit site),用於結合 tRNA 和肽鏈。
      • 轉運 RNA (tRNA): 小分子 RNA,其一端帶有能識別 mRNA 密碼子的反密碼子 (anticodon),另一端攜帶對應的氨基酸。
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第 4 題12 分

在細菌中什麼是乳糖操縱組 (lactose operon)? 並描述在葡萄糖充足及缺乏的狀況下,此操縱組的運作方式。

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本題主要考驗學生對細菌基因調控機制,特別是原核生物乳糖操縱組 (lac operon) 的理解,包括其結構組成、調控元件以及在不同代謝物條件下的運作模式。

核心觀念:
操縱組 (operon) 是原核生物基因組織的一種形式,指一組在功能上相關的基因,它們被一個共同的啟動子 (promoter) 和操縱子 (operator) 所控制,並由一個共同的調節基因 (regulatory gene) 所調控。乳糖操縱組是調節細菌代謝乳糖的基因系統。

解題步驟:

  1. 乳糖操縱組 (Lactose Operon, lac operon) 的組成:
    lac operon 包含以下幾個關鍵組成部分:

    • 調節基因 (Regulatory Gene): lacI 基因,位於操縱組結構基因的下游,獨立於操縱組本身啟動子進行轉錄。它編碼一個乳糖操縱阻遏蛋白 (lac repressor)。
    • 操縱子 (Operator, O): 一段位於啟動子下游、結構基因上游的 DNA 序列。乳糖操縱阻遏蛋白可以結合到操縱子上,阻斷 RNA 聚合酶與啟動子的結合,從而抑制轉錄。
    • 啟動子 (Promoter, P): RNA 聚合酶結合並開始轉錄的 DNA 區域。
    • 結構基因 (Structural Genes): 編碼參與乳糖代謝的酶。在 lac operon 中,有三個結構基因,它們被共同的啟動子和操縱子調控:
      • lacZ: 編碼 β-半乳糖苷酶 (β-galactosidase),負責將乳糖分解為葡萄糖和半乳糖。
      • lacY: 編碼乳糖滲透酶 (lactose permease),負責將乳糖運輸到細胞內。
      • lacA: 編碼硫代半乳糖苷轉乙醯酶 (thiogalactoside transacetylase),其功能與乳糖代謝的直接關係尚不明確,但可能參與解毒。
  2. 乳糖操縱組的運作方式(調控機制):
    lac operon 的表達受到兩種主要調控:

    • 負調控 (Negative Regulation): 由乳糖操縱阻遏蛋白 (lac repressor) 負責。
    • 正調控 (Positive Regulation): 由 catabolite activator protein (CAP) 和環腺苷酸 (cAMP) 複合物負責,調控乳糖操縱組在葡萄糖缺乏時的表達水平。
  3. 在葡萄糖充足的狀況下 (Glucose High):

    • 葡萄糖充足 → cAMP 水平低: 當細胞內葡萄糖濃度高時,cAMP 的合成受到抑制,導致細胞內 cAMP 濃度低。
    • CAP-cAMP 複合物未形成: cAMP 濃度低,無法與 CAP 結合形成 CAP-cAMP 複合物。
    • CAP-cAMP 複合物無法結合啟動子: CAP-cAMP 複合物是乳糖操縱組的正調控因子,它能夠結合到啟動子附近的一個特定位點,增強 RNA 聚合酶與啟動子的結合效率,促進轉錄。如果沒有 CAP-cAMP 複合物,RNA 聚合酶與啟動子的結合效率很低。
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第 5 題8 分

食鹽 (Sodium chloride; NaCl) 的分子量約為 58 g/mol,請問想要配置 500 毫升 (mL) 的 2 µM 食鹽水需要多少重量 (weight) 的食鹽,請將算式過程列出,最後的結果需要以公克 (g) 為單位。

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本題考驗學生對於溶液濃度計算的基本能力,特別是 molarity (莫耳濃度) 與 mass (質量) 之間的轉換,以及單位換算。

核心觀念:

  • 莫耳濃度 (Molarity, M): 定義為每公升溶液中所含溶質的莫耳數。單位是 mol/L。
  • 微莫耳濃度 (micromolar, µM): 1 µM=10−6 mol/L1 \text{ µM} = 10^{-6} \text{ mol/L}。
  • 莫耳質量 (Molar Mass): 一莫耳物質的質量,單位是 g/mol。
  • 質量 (Mass): 物質的重量,單位是克 (g)。

解題步驟:

  1. 理解題目要求:

    • 目標濃度:2 µM2 \text{ µM}
    • 目標體積:500 mL500 \text{ mL}
    • 溶質:食鹽 (NaCl)
    • NaCl 的分子量:58 g/mol58 \text{ g/mol}
    • 要求計算需要多少質量的 NaCl (單位:g)。
  2. 單位換算:

    • 將濃度單位 µM 換算為 M:
      2 µM=2×10−6 mol/L2 \text{ µM} = 2 \times 10^{-6} \text{ mol/L}
    • 將體積單位 mL 換算為 L:
      500 mL=500×10−3 L=0.5 L500 \text{ mL} = 500 \times 10^{-3} \text{ L} = 0.5 \text{ L}
  3. 計算所需 NaCl 的莫耳數:
    根據莫耳濃度的定義:
    莫耳濃度 (M) = 莫耳數 (mol) / 體積 (L)
    因此,莫耳數 (mol) = 莫耳濃度 (M) × 體積 (L)
    所需 NaCl 的莫耳數 = (2×10−6 mol/L)×(0.5 L)(2 \times 10^{-6} \text{ mol/L}) \times (0.5 \text{ L})
    所需 NaCl 的莫耳數 = 1×10−6 mol1 \times 10^{-6} \text{ mol}

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第 6 題8 分

如何利用 95% 的酒精配置 1000 毫升 (mL) 的 70% 酒精?

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本題考驗學生對於溶液稀釋計算的理解,特別是利用已知濃度的濃縮溶液來配製稀釋溶液。

核心觀念:
在溶液稀釋過程中,溶質的總量保持不變,只有溶劑的量改變。因此,我們可以利用以下公式:
C1V1=C2V2C_1 V_1 = C_2 V_2
其中:

  • C1C_1 是起始濃度的濃度 (本題中是 95% 酒精)。
  • V1V_1 是需要取用的起始濃度溶液的體積。
  • C2C_2 是目標濃度的濃度 (本題中是 70% 酒精)。
  • V2V_2 是目標濃度溶液的總體積 (本題中是 1000 mL)。

解題步驟:

  1. 理解題目要求:

    • 起始溶液濃度:C1=95%C_1 = 95\% (體積百分比,v/v)
    • 目標溶液濃度:C2=70%C_2 = 70\% (體積百分比,v/v)
    • 目標溶液總體積:V2=1000 mLV_2 = 1000 \text{ mL}
    • 要求計算需要取用多少體積的 95% 酒精 (V1V_1)。
  2. 套用稀釋公式:
    C1V1=C2V2C_1 V_1 = C_2 V_2
    (95%)×V1=(70%)×(1000 mL)(95\%) \times V_1 = (70\%) \times (1000 \text{ mL})

  3. 解出 V1V_1:
    V1=C2V2C1V_1 = \frac{C_2 V_2}{C_1}
    V1=(70%)×(1000 mL)95%V_1 = \frac{(70\%) \times (1000 \text{ mL})}{95\%}
    V1=70×100095 mLV_1 = \frac{70 \times 1000}{95} \text{ mL}

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